Enfermedades de hojas y brotes
Enfermedades de hojas y brotes (Ascomicetes)
| Leer: | Manion cap. 10, pag. 134-139, 155 | |
| Fernandez de Ana-Magan,-F.J. 1975. La enfermedad de la "banda roja" en el Pinus radiata. Comunicaciones INIA. Serie Proteccion vegetal,3: 5-16. | banda roja | |
| Muñoz Lopez, C. 1997.Sirococcus strobilinus Preuss, un hongo responsable de la muerte de brotes en Pinus halepensis Miller. Bol. San. Veg. Plagas, 23: 595-606. | sirococcus |
Tipos
Ascomicota, Basidiomicota (royas), Bacterias, Virus
Modo de acción de los hongos
"huevos de oro"
El hongo crece sobre o entre las células, produce haustorios que penetran la pared pero no la membrana. Los nutrientes de la planta van a la celula infectada y al hongo. La célula no muere
"gallina en pepitoria"
Penetra en la celula y absorbe todos los nutrientes. La celula muere rápidamente.
Ciclo patológico
| ascocarpos | en otoño o primavera en hojas o ramas infectadas |
| ascospora | salen al tiempo que las hojas nuevas |
| infección y micelio | |
| conidios | |
| infecciónes secudarias | |
| ascocarpos |
fase sexual - invernada, recombinación genética
fase asexual - multiplicación rápida de genotipo bueno
ascos y deuteros son parásitos y saprófitos y sobreviven en ramas y detritus; los mildius (ascomycota, pyrenomycetes, erisiphales) no e invernan en cleistotecios
necesitan humedad para infectar y descargar ascosporas y conidios. Problema en primaveras húmedas y frias
entran por la cuticula o por los estomas
Síntomas
marchitez o necrosis (total o localizada) de hojas
perdida total de hojas y echar otras nuevas
poco crecimiento apical y ramas puntisecas
escobas por formación de yemas adventicias
Signos
fructificaciones de hongos en zonas necrosadas
Métodos de reconocimiento
| Insectos | mordiscos, larvas o heces |
| Contaminación | moteado |
| Virus | moteado y anillos |
| Bacterias | se van al microscopio o cultivos |
| Heladas tardías | daños en toda la copa y hongos abajo que está más húmedo |
| Calor en invierno | salen de dormición y echan hojas que mueren, hongos parásitos colonizan hojas muertas |
| Hongos | esporocarpos y microscopio para identificar y ver si está descrito como patog. Si no Koch |
| Agente biologico | transición gradual entre parte enferma y sana y abrupta en no biologico |
Control
Silvicultura
estructura para aireacion
poda
quema de hojas en otoño
Adecuación de especie y lugar
Fungicidas
Variedades resistentes
Ejemplos
Microsphaera alphitoides (Oidio)
Ascomycetes, Pyrenomycetes, Erysiphales
Forman cleistotecios y el micelio está sobre la superficie de la hoja.
Grave en viveros y plantaciones jóvenes
Los brotes que no mata el hongo no se endurecen y mueren en las heladas
Más información en: PB 208-211, TJ 168-169, MUÑ 97-99 SMIT 305, BUT 61-63, SF 420-421
Mycosphaerella pini
(= Scirria pini), forma asexual: Dothistroma septospora (=D. pini)
Banda roja
Ascomycetes, Loculoascoycetes, Dothideales (Mycosphaerella), o Deuteromyetes, Coelomycetes, Sphaeropsidales (Dothistroma)
Ataca fuertemente a Pinus radiata pero puede infectar a otros Pinus, Pseudotsuga y Larix
Apenas ataca al Pinus radiata en su hábitat nativo, pero causa grandes pérdidas en plantaciones en otros lugares.
Puede matar plantaciones de menos de 15 años. En árboles mayores causa pérdidas de crecimiento, pero no mortalidad.
Se puede controlar con fungicidas con cobre.
Más información en: TAIN 491-492, SINC 48-49, PB 145-146, MAN 147-148, SMIT 414, CON 57-59, BUT 36-37, ABG 139-141, SF 328-329
Sphaeropsis sapinea (Diplodia pinea)
Penetra por hojas brotes y piñas causando infecciones moderadas que normalmente no son un problema grave.
Se convierte en grave cuando los árboles están debilitados o hay un gran número de heridas (granizo o podas).
Más información en: TAIN 489-490, SINC 136-137, MAN 154-155, TJ 147-150, SMIT 460, CON 42-43, BUT 80-81, SF 346-347
Sirococcus conigenus
Soflamado
Rápida expansión por las zonas de P. halepensis de la península en los últimos años.
Defolia la parte inferior de la copa y aumenta la susceptibilidad a otros agentes.
Se propaga por semilla. Grave riesgo de propagación de la enfermedadpor planta de vivero obtenida a partir de semilas regogidas en zonas infectadas.
Más información en: BUT 18-19, PB 130-131, SF 332-333
http://www.mma.es/docs/conservnat/pforestal/sofamado.htm, http://www.pfc.cfs.nrcan.gc.ca/nursery/pests/sirococc.htm.
Enfermedades de hojas y brotes (Royas)
| Leer: | Manion cap. 11 pag. 157 |
Son..
Ph. Basidiomycota, Cl. Hemibasidiomycetes, Or. Uredinales
Parásitos obligados (alguna se cultiva)
dos hospedantes
Infectan hojas o brotes (tambien cambium y floema en royas de tallo)
Modo de acción
Entran entre celulas y absorben nutrientes por haustorios
Ciclo
Síntomas
Ramas muertas, chancros, agallas
Signos
aedios, uredios, telios, lesion, spermogonios alrededor del chancro
Diagnosis
identificacipon del hongo por las claves
Koch necesita huesped alternativo para conseguir basidiosporas
Ejemplos y control
Cronartium flacidum, Peridermium pini =Endocronartium pini
Basidiomycete, Hemibasidiomycete, Uredinal
Roya vesicular de corteza de pino
Espermacios y aeciosporas en pinos (P. sylvestris, P. pinaster, P. laricio y P. halepensis)
Urediosporas, teliosporas y basidiosporas en Vicetoxicum y Paeonia en C. fl. y en pino en E. pini.
Chancros, resinosis y muerte en varios años; daños serios
Las aeciosporas infectan un nuevo árbol
Podar y quemar ramas con peridios (amarillos conspicuos); entresacar pies afectados
Tuberculina maxima hiperparásito capaz de reducir producción de aeciosporas un 30%
Más información en: PB 151-152, TJ 143-145, SMIT 536-539, CON 30-31, SF 336-337
Melampsora populnea (Pers.) P.Karsten f.sp. pinitorqua R. Hartig
(=Melampsora pinitorqua Rostr.)
Basidiomycetes, Hemibasidiomycetes, Uredinales
Urediosporas, teliosporas y basidiosporas en P. alba y P.tremula
Espermacios y aeciosporas en Pinus sylvestris, P.pinaster, P. pinea
En pino ataca la guia y el árbol no vale para sierra. Peligroso en plantaciones jóvenes.
En chopo no causa pérdidas, ataca al final de la estación. Peligroso en viveros.
Control con fungicidas en vivero y eliminando el huésped alternativo en plantación.
Más información en: PB pág. 148-150, TJ pág. 146-147, SMIT pág. 541-542, CON pág. 33-34, SF 340-341
Imágenes de signos y síntomas.
Gymnosporangium clavariaeforme
Ataca a Juniperus y Crataegus, y ocasionalmente a Pyrus
Información adicional:
PB 199-202, BUT 86, SF 298-299
Imágenes de signos y síntomas.
Melampsorella caryophyllacearum
Forma escobas de bruja y engrosamientos en ramas jóvenes. Al crecer los engrosamientos se forman chancros y grietas que aprovechan otros hongos para infectar..
El huésped alternativo son plantas de la familia Caryophyllaceae.
Primaveras húmedas favorecen la infección.
Inutiliza el árbol si ataca la guía.
Puede causar pérdidas en ataques severos.
Información adicional:
SINC 265-266, PB 184-186, SMIT 543-544, CON 53,74,79, BUT 196, ABG 175-178.
Enfermedades de hojas y brotes (Bacterias)
Erwinia amylovora
Ataca a rosaceas
Poco importante en montes, pero MUY importante en frutales
Programa de detección precoz
Erradicación de focos
Información adicional:
AGR4 pág. 426-429, SINC pág. 162-165, PB pág. 72-74, MAN pág. 86-88, SMIT pág. 224-226.
Enfermedades de hojas y brotes (Plantas)
Viscum album
Hemiparásita
Propagación por pájaros (bayas pegajosas)
Produce clorosis y perdida de crecimiento (20% Abies Pirineo)
Información adicional:
TJ pág. 67-68, CON pág. 38, SF 458-459
Enfermedades de hojas y brotes (Plantas)
ChMV (Virus (supuestamente) del Mosaico del Castaño)
Causa incompatibilidad de injertos, clorosis venial y necrosis en corteza
No purificado, no identificado
Enfermedades del tronco
| Leer: | Manion cap. 12 pag. 182 | |
| Heiniger,-U; Rigling,- ; 1994. Biological control of chestnut blight in Europe. Annu. Rev. Phytopathol, 32: 581-599 | biocontrol | |
| Fernandez de Ana Magán, F.J.; Puertas Tricas, F.; Mansilla Vázquez, J.P.; Traver, C.; Pintos Varela, C.; Rodríguez-Fernández, R.J.; 1993. Lucha integrada contra la enfermedad del " Chancro" del castaño. Proc. Congreso Forestal Español. Lourizan. Ponencias y comunicaciones. Tomo III. (Biblioteca) | luchaintecas | |
| Anagnostakis, S.L. 1999. Chestnut research in Connecticut: breeding and biological control. Acta Horticulturae, 494: 391-394. | chestnut | |
| Oliva Estanyol,-M; Molinass de Ferrer,-ML. 1984. Incidencia de Hypoxilon mediterraneum en los alcornocales gerundenses. Boletín de la estación central de ecología (ICONA),13:9-16 | gerunde |
Son...
Parásitos de floema, cambium y xylema externo y saprófitos de celulas muertas de floema y xilema
Desde "asesinos" a "puntilleros" pasando por "rémoras"
Oomycotas (Phytophtora), ascomycotas y basidiomycotas
Modo de acción
El hongo entra al tejido vascular donde hay nutrientes. El árbol produce barreras de callo alrededor de la infección para parar al hongo .
Tipos
Saprófitos que contribuyen a decaimiento
no pueden vencer las defensas de los árboles sanos y atacan solo a árboles debilitados
Anuales
Oportunista, infecta por una herida e invade antes de que el árbol responda. Al final el árbol neutraliza al hongo
Parásitos facultativos perennes
permanecen como saprófitos en los tejidos muertos del chancro
invaden en otoño e invierno cuando el árbol esta despistado.
Toleran las defensas del árbol
Difusos
Las defensas del árbol no paran la invasion del hongo cuyo micelio penetra rápidamente y produce toxinas
Ciclo
Esporas infectan heridas o bases de ramas rotas (a veces hojas)
El micelio crece en el árbol y produce conidios y ascosporas si hay infección con una cepa compatible
El micelo sobrevive saprófito en tejidos muertos del chancro, en ramas muertas on el suelo
Diseminación de conidios o esporas por aire, salpicaduras de lluvia, roedores, insectos, motosierras, etc.
Síntomas
Desde decoloración de la corteza o abultamiento hasta chancro enorme
Diagnosis
Identificación del hongo
Aislar el hongo y Koch. El patógeno estará en el borde del chancro en primera linea contra los tejidos sanos del árbol
Ejemplos y control
Saprofitos que contribuyen a decaimiento
Cytospora chrysosperma (Populus y Salix)
Nectria coccinea (Fagus)
Anuales
Fusarium solani chancro de Acer
Parásitos facultativos perennes
Nectria galligena
Ceratocystis fimbriata en Populus
Difusos
Cryphonectria (Endothia) parasitica
Ascomycota, Pyrenomycetes, Sphaeriales
Patógeno y saprófito
Produce conidios todo el año
El árbol muere en unos 10 años
No hay tratamiento, pero...
Cepas hipovirulentas están haciendo retroceder la enfermedad en Italia
C. sativa, C. mollissima y C. crenata tienen una resistencia inducida que aumenta en rebrotes de tocones de los que se ha cortado un tronco enfermo
síntomas: hojas secas en rama y brotes epicormicos debajo del chancro .
Imágenes de signos y síntomas.
Hypoxylon mediterraneum
Ascomycota, Pyrenomycetes, Sphaeriales
Quercus, Castanea, Eucalyptus, Fagus, Juglans, Platanus, Populus
Parásito oportunista, ataca a árboles debilitados
Puede infectar árboles vigorosos y permanecer en ellos sin extenderse hasta que el árbol es debilitado por algún otro factor y entonces extenderse y matar el árbol
Tratamiento: entresaca de pies enfermos y poda. Quema de restos de árboles afectados
Prevención por aclareo de la masa
Tumores / agallas
Corynebacterium halepensioides en P.halepensis
Bacteria causante de la Tuberculosis del pino
Poca importancia, produce tubérculos en las ramas
Agrobacterium tumefaciens
esquema AGR4: 440
No ataca a monocotiledóneas ni a gymnospermas
Grave en frutales, poco importante en bosque
Vive en el suelo entra por heridas
Infecta células dañadas, crece y libera el plásmido Ti que entra en las células adjacentes y se incorpora a su genoma. Las células modificadas se dividen y multiplican anormalmente y se forma la agalla.
La bacteria vuelve al suelo con trozos del tejido que caen de la agalla
Control biológico: Agrobacterium radiobacter cepa 84 inhibe la transferencia de Ti de Agrobacterium tumefaciens
Vector genético: Ti atenuado puede introducir genes en el genoma de la planta
Marchitamientos vasculares y azulados
| Leer: | Manion cap. 13 |
| Manion cap. 15 | |
| Pajares, J.A. y Martínez, A. 1990. Métodos y estrategias de control de la grafiosis. En "Los olmos y la grafiosis en España", Gil, L. (Ed.). MAPA, ICONA, Madrid (Biblioteca) | |
| Cadahia, D. 1999. Bursaphelenchus xylophilus, (Steiner et burhrer) (Nematoda: Aphelenchodidae). Peligro proximo para los pinares de España y Portugal. Terralia, 3 (10): 22-28. |
Modo de acción
Invasión de vasos y marchitamiento
Tilosas taponan los vasos
Esporas o hifas taponan la placa cribosa terminal de traqueidas
Producen toxinas
Cambio en la viscosidad del contenido de los vasos
Parasitan las células del parénquima anexas a tubos cribosos
Embolia
Las hifas de color oscuro creciendo por los vasos causan la coloración azulada.
Ciclo
Entrada de esporas por herida en raíz o tallo. El vacio mete las esporas por toda la planta
Producción de micelio o más esporas (gemación). El hongo pasa por las placas cribosas para infectar celulas de parénquima
Esporulación y diseminación cuando el árbol muere
Esporocarpos y conidioforos adecuados a dispersión por insectos
Peritecios de cuello largo acumulan esporas en matriz pegajosa en la punta
Conidióforos agrupados en coremios con esporas en matriz pegajosa en la punta
Síntomas
Marchitez en las hojas y en seguida senescencia con caida o no
Coloración en los vasos del año en ramas afectadas
Azuleo radial
Diagnosis
Identificación del hongo aislando de rama infectada por fructificaciones asexuales.
Ejemplos y control
Grafiosis, Ophiostoma ulmi
Ascomycota, Pyrenomycetes, Sphaeriales
Patógeno y saprófito
Ataca preferentemente árboles debilitados por Galerucella luteola
Multiplicación rápida por conidios y gemación
Dispersado por Scolytus scolytus y S. multistriatus
Toxinas del hongo inducen tilosis del árbol que bloquean vasos
Hacen falta varios ataques en años consecutivos para matar un árbol
Tratamiento sólo a base de inyección de fungicidas para árboles de interés especial
Prevención:
impidiendo ataques de Galerucella y de Scolytus
Quemar todos los olmos atacados o muertos
Aclarar o eliminar competencia de otras especies
Plantar variedades resistentes
Plantar sólo en zonas donde no se de la enfermedad
Imágenes de signos y síntomas.
Ceratocystis fagacearum
Ausente en Europa (todavía) pero grave en Norteamérica. Los robles europeos son susceptibles.
Prevención en importaciones: a) tratamiento con bromuro de metilo (hasta el 2003), b) descortezar troncos.
"Azuleo"
Estos hongos atacan a la madera recien apeada que todavía tiene la albura viva y atrae escolítidos.
Evitar infección inmediatamente despues de corta subiendo o bajando el contenido de humedad, mediante fungicidas o descortezando para evitar la entrada e escolítidos.
Si la madera está infectada, el hongo volverá a crecer si las condiciones ambientales son buenas.
Bursaphelenchus xylophilus
Nematodo del Pino
Ha llegado a Portugal
Importantísimo extremar precauciones.
Todas la especies de Pinus de la península son susceptibles
Es dispersado por un cerambícido.
Causa sítomas de marchitamiento vascular.
Control: Detección precoz y erradicación.
Descomponedores de madera
| Leer: | Manion cap. 14 | |
| Shigo, A.L.; Hillis, W.E. 1973. Heartwood, discoloured wood and microorganisms in living trees. Annu. Rev. Phytopathol. 11: 197-222. | heartwood |
Tipos
Descomponedores
duramen de árboles vivos **
árboles muertos x
productos de la madera x
Pudrición de copa o de tocón
Pudrición parda, blanca, blanda
parda
Descomponen celulosa y hemicelulosa y dejan lignina (pudrición cúbica)
hymenomycetes
blanca
descomponen lignina, celulosa y hemicelulosa, pero dejan algo de celulosa (pudrición fibrosa)
hymenomycetes
blanda
Descomponen celulosa y hemicelulosa (cuarteado superficial)
Ascomycetes y Deuteromycetes
Modo de acción
Madera húmeda por encima del punto de saturación de la fibra pero por debajo del punto de saturación de la madera para que haya aire
Hongos de pudrición blanda descomponen madera saturada de agua, pero sólo las capas superficiales donde llega el oxígeno del agua
El hongo crece por el lumen de las células y se rodea de una capa mucilaginosa por donde difunden los enzimas y los productos de degradación de la madera
No "matan" los árboles, debilitan los troncos y otros agentes los tiran
Comparación entre descomponedores de albura (azulado) y de duramen (pudrición)
azulado |
pudrición |
|
| sustrato | citoplasma |
pared |
| atacan | albura |
duramen |
| humedad | = |
= |
| Oxígeno | = |
= |
| temperatura | = |
= |
Ciclo
espora llega a herida susceptible que deja duramen al descubierto(inhibidores, humedad, temperatura)
espora germina; hifas crecen por lumen de células y pasan de célula a célula por lámina cribosa y después por agujeros hechos por ellas
el árbol se defiende:
produciendo compuestos fenólicos tóxicos en la herida que inhibe hongos
creando compartimentos e impidiendo el acceso del hongo de unos a otros (dentro: madera de verano; fuera: cambium; ariba y abajo: tilosis
en algunos hongos la espora es haploide y necesita una segunda espora para que el micelio sea dicariótico y pueda fructificar.
Infección / invasión
Hartig: infección por esporas termina en descomposición
Haddow-Etheridge: infección de ramas pequeñas, latencia hasta debilitación del árbol
Shigo: sucesión bacterias - deuteros - basidios
Humedad: si el xilema está saturado no hay infección, solo cuando está alterado que pierde agua
Efectos
Pérdida de peso
Por oxidación a CO2+H2O de la celulosa y lignina
Pérdida de resistencia
Pudrición parda causa mayor pérdida de resistencia porque rompe cadenas de celulosa al azar por métodos químicos, pudrición blanca las rompe por los extremos con exocelulasas y tarda más en perder resistencia
Pérdida de madera en pie
Estimar el volumen de madera afectado para deducirla del total
Reciclado de residuos por saprófitos
Descomponen los restos de madera en el suelo. Pueden atacar árboles enfermos
Aumento de permeabilidad de la madera
Favorece la entrada de agua y posteriores ataque de hongos
Aumento de conductividad de la madera
Por la pérdida de estructura celular
Cambios en volumen de madera
Causan torsión en el secado, peor en pudrición parda
Cambios en calidad para pulpa
Peor en pudr. parda
Decoloración de la madera
Problema o ventaja
Métodos de detección
Macroscópicos
esporocarpos , nudos hinchados, bases de ramas podridas, cicatrices de fuego
Microscópicos
Presencia de hifas (necesario, pero no suficiente) o paredes degradadas por su acción
Aislamiento e identificación
Aislar del frente de avance del hongo si es posible
Claves de identificación
Diferencias de pudrición de duramen / saprófitos
Pudrición |
Saprófitos |
|
| Fructifican | base de ramas muertas | todo el tronco |
| Esporocarpos | pocos grandes | muchos pequeños |
| Especies | pocas | muchas |
Ejemplos
Pudrición parda. Ataca a árboles debilitados o descompone árboles muertos.
Información adicional
SINC 348-349, SMIT 585, CON 23, BUT 165-166, SF 446-447
Causada por varios hongos (Oxyporus, Ganoderma, Ungulina )
El color ocurre por la muerte de células del árbol, no por la degradación de sus paredes
La madera del falso duramen tarda muchos años en pudrirse y no suele perder resistencia
Información adicional:
TJ 127-129
Producido por Laetiporus sulfureus (al menos)
Daños serios en castaño
Entra por heridas y produce pudrición cúbica
Información adicional:
BUT 169
Papel en el ecosistema
Estos hongos retiran los árboles inferiores y los viejos de la masa.
No cortar árboles afectados es hacer selección genética negativa
Apeando árboles viejos o muertos favorecen la sucesión y el ciclo de nutrientes (un árbol en pie tardaría mucho más en descomponerse)
Importancia en silvicultura
Las heridas al aclarar un monte bajo aumentarán las pudriciones en la estación (quitar rebrotes próximos a corte)
Los árboles suprimidos es facil que estén infectados. Si se dejan en un aclareo, la siguiente corta tendrá mucha pudrición.
Control
Evitar heridas (tratamiento de heridas no está claro)
En podas, no cortar las ramas a ras del tronco
No dejar árboles suprimidos en un aclareo
| Leer: | Manion cap. 16, | |
| Abreu Trigueros,-MJ. 1990. Heterobasidium annosum (Fr.) Bref.: Un hongo del suelo parásito de especies forestales. Cuadernos de Fitopatología,23:90-94. | ||
| Pratt, J. E. 1997.Fomes stump treatment - an update. Quarterly Journal of Forestry, 91(1): 63-65. | ||
| Vieitez,-J; Ballester; Mantilla,-JLG; Vieitez,-E. 1983. Sobre la resistencia del castaño a Phytophthora cinnamomi y Ph cambivora. Congreso Internacional sobre el Castaño. Lourizán (Pontevedra). | ||
| Cobos, P.1989. Fitopatología del castaño. MAPA, Bol. San. Veg. Fuera de serie Nº16. Pag. 53-58. | ||
| Garraway, M.O.; Hüttermann, A.; Wargo, P.M. 1991. Ontogeny and Physiology (of Armillaria root disease). In "Armillaria root disease". Shaw III, C.G.; Kile, G.A. (Eds.), Agriculture handbook No. 691. Forest Service, USDA. Washington, D.C. | ||
| Fernandez de Ana Magán,-FJ. 1982. Las hogueras en el monte y el ataque del hongo Leptographium gallaeciae sp. nv. sobre P. pinaster Ait. Boletín del Servicio de Plagas, 8 : 69-92. | hogueras |
Medio bosque
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Pseudotsuga
menziesii, 40 años Coast Range, Oregon, EEUU, Fogel and Hunt 1979 |
Reducciones de crecimento hasta 20% sin síntomas
Tipos
Patógeno dominante, tejido no específico
Protoctistas, Oomycota, Peronosporales, Pythiaceae, Phytophtora y Pythium
Generalistas
Capaces de encontrar un punto debil, vencer defensa del árbol e invadir rápidamente
Descomponen tejido de raiz en poco tiempo
Árbol muere por deficiencia de nutrientes
Hospedante dominante, tejido no específico
Basidomycota
Armillaria sp., Heterobasidion annosum, Phellinus werii
Viven como saprofitos en tocones muertos o pudrición de duramen en la base del tronco o raices estructurales. Un cambio en el vigor del árbol les permite saltar al cambium y matar el árbol
Desde una raíz pueden atacar la superficie de otra, debilitar el cambium y atacarlo después
Reducción de crecimiento en árboles sin síntomas
Hospedante dominante, tejido específico
Verticillium, Leptographium (black stain)
Entran por la raíz, infectan el tejido vascular, y cuando el árbol muere invaden el cambium (mecanismo mal conocido)
Algunos pueden pasar tiempo en el cortex antes de entrar a los vasos
Ciclos
Basidiomicetes
Esporas o conidios infectan heridas
Invasión de tejidos
Pudrición de madera
Formación de esporas/conidios
Dispersión: viento o insectos
injertos de raíz
rizomorfos (Armillaria)
Oomicetes
Zoosporas buscan un punto de entrada
Germinación, invasión
Descomposición de la raíz
Formación de esporangios - zoosporas (asexual, más infección)
Formación de anteridios/oogonios - oospora (sexual, resistencia)
Síntomas
Deficiencia de nutrientes y/o agua
Clorosis
Falta de crecimiento
Síntomas por rodales
Rodales de árboles muertos y árboles debilitados alrededor
Raices muertas, falta de raices secundarias
Diagnosis
Raices muertas
Fructificaciones de patógenos de raíz
Dificil de aislar porque hay muchos saprófitos en el suelo
Si se sospecha el agente se puede intentar cultivar con medios selectivos o capturar con un cebo.(Phytophtora)
Ejemplos y control
Phytophthora cinnamomi
Tinta del castaño (ataca a otras 950 especies Chamaeocyparis lawsoniana es muy sensible)
Citado en España en 1726 (Extremadura)
Causante de la desaparición de castañares en el N y O de la peninsula
Parásito y saprófito en el suelo
Propagación por micelio transportado, zoosporas y esporas de resistencia
Control
Tratamiento:
descalce y fungicidas en base del tallo (Torres Juan)
Prevención:
Planta resistente (desarrollada en CIF
Lourizán)
Suelos bien drenados
Movimiento de vehiculos en tiempo húmedo
Micorrizas antagonistas?
Información adicional
TAIN pág. 340-363, SINC pág. 288-291, PB pág. 279-281, MAN pág. 297-299, TJ pág. 113.117, PAVE pág. 939-948, COB pág. 53-58, MUÑ pág. 40-41,51-54, SMIT pág. 252-254, CON pág. 4,5,6, ABG 273-276, 369-372.
Armillaria sp.
Basidiomicetes, Himenomycetes, Agaricales
Parásito y saprófito
Parásito del cambium (anillador) y pudridor de duramen
Propagación por esporas, rizomorfos e injertos de raíz
Rizomorfos debajo de la corteza en el cuello de la raíz
Control
Plantar especies resistentes (si las hay en la zona)
Arrancar o fumigar tocones y cavar zanjas alrededor (extremo)
Subcontratarle el aclareo precomercial
Mantener la masa con buén crecimiento
Imágenes de signos y síntomas.
Información adicional
AGR4 pág. 397-399, TAIN pág. 419-431, SINC pág. 308-313, MAN pág. 299-303,330-334, SMIT pág. 587, CON pág. 13-14,87, BUT 157-159, ABG 53-56.
Heterobasidion annosum (Fomes annosus)
Basidiomicete, Himenomycete, Aphyllophorales
Parásito y saprófito
Propagación por esporas infectando heridas o tocones e injertos de raíz
Pudre las raices estructurales y el viento tira el árbol
Ataca prefentemente a árboles jóvenes en plantaciones monoespecíficas
Control
Evitar heridas
Tratar tocones nada más cortarlos con urea, borax, NaNO3 o Phebiopsis gigantea
Información adicional
AGR4 pág. 196, TAIN pág. 393-410, SINC pág. 314-317, PB pág. 92-112, MAN pág. 303-306, TJ pág. 142-143, PAVE pág. 940,954-955, SMIT pág. 582-584, CON pág. 12,13, BUT 150-153, ABG 57-60