Enfermedades de hojas y brotes

Enfermedades de hojas y brotes (Ascomicetes)

Leer: Manion cap. 10, pag. 134-139, 155  
  Fernandez de Ana-Magan,-F.J. 1975. La enfermedad de la "banda roja" en el Pinus radiata. Comunicaciones INIA. Serie Proteccion vegetal,3: 5-16. banda roja
  Muñoz Lopez, C. 1997.Sirococcus strobilinus Preuss, un hongo responsable de la muerte de brotes en Pinus halepensis Miller. Bol. San. Veg. Plagas, 23: 595-606. sirococcus

Tipos

Ascomicota, Basidiomicota (royas), Bacterias, Virus

Modo de acción de los hongos

"huevos de oro"

El hongo crece sobre o entre las células, produce haustorios que penetran la pared pero no la membrana. Los nutrientes de la planta van a la celula infectada y al hongo. La célula no muere

"gallina en pepitoria"

Penetra en la celula y absorbe todos los nutrientes. La celula muere rápidamente.

Ciclo patológico

ascocarpos en otoño o primavera en hojas o ramas infectadas
ascospora salen al tiempo que las hojas nuevas
infección y micelio  
conidios  
infecciónes secudarias  
ascocarpos  

fase sexual - invernada, recombinación genética

fase asexual - multiplicación rápida de genotipo bueno

ascos y deuteros son parásitos y saprófitos y sobreviven en ramas y detritus; los mildius (ascomycota, pyrenomycetes, erisiphales) no e invernan en cleistotecios

necesitan humedad para infectar y descargar ascosporas y conidios. Problema en primaveras húmedas y frias

entran por la cuticula o por los estomas

Síntomas

marchitez o necrosis (total o localizada) de hojas

perdida total de hojas y echar otras nuevas

poco crecimiento apical y ramas puntisecas

escobas por formación de yemas adventicias

Signos

fructificaciones de hongos en zonas necrosadas

Métodos de reconocimiento

Insectos mordiscos, larvas o heces
Contaminación moteado
Virus moteado y anillos
Bacterias se van al microscopio o cultivos
Heladas tardías daños en toda la copa y hongos abajo que está más húmedo
Calor en invierno salen de dormición y echan hojas que mueren, hongos parásitos colonizan hojas muertas
Hongos esporocarpos y microscopio para identificar y ver si está descrito como patog. Si no Koch
Agente biologico transición gradual entre parte enferma y sana y abrupta en no biologico

Control

Silvicultura

estructura para aireacion

poda

quema de hojas en otoño

Adecuación de especie y lugar

Fungicidas

Variedades resistentes

Ejemplos

Microsphaera alphitoides (Oidio)

Ascomycetes, Pyrenomycetes, Erysiphales

Forman cleistotecios y el micelio está sobre la superficie de la hoja.

Grave en viveros y plantaciones jóvenes

Los brotes que no mata el hongo no se endurecen y mueren en las heladas

Más información en: PB 208-211, TJ 168-169, MUÑ 97-99 SMIT 305, BUT 61-63, SF 420-421

Mycosphaerella pini

(= Scirria pini), forma asexual: Dothistroma septospora (=D. pini)

Banda roja

Ascomycetes, Loculoascoycetes, Dothideales (Mycosphaerella), o Deuteromyetes, Coelomycetes, Sphaeropsidales (Dothistroma)

Ataca fuertemente a Pinus radiata pero puede infectar a otros Pinus, Pseudotsuga y Larix

Apenas ataca al Pinus radiata en su hábitat nativo, pero causa grandes pérdidas en plantaciones en otros lugares.

Puede matar plantaciones de menos de 15 años. En árboles mayores causa pérdidas de crecimiento, pero no mortalidad.

Se puede controlar con fungicidas con cobre.

Más información en: TAIN 491-492, SINC 48-49, PB 145-146, MAN 147-148, SMIT 414, CON 57-59, BUT 36-37, ABG 139-141, SF 328-329

Sphaeropsis sapinea (Diplodia pinea)

Penetra por hojas brotes y piñas causando infecciones moderadas que normalmente no son un problema grave.

Se convierte en grave cuando los árboles están debilitados o hay un gran número de heridas (granizo o podas).

Más información en: TAIN 489-490, SINC 136-137, MAN 154-155, TJ 147-150, SMIT 460, CON 42-43, BUT 80-81, SF 346-347

Sirococcus conigenus

Soflamado

Rápida expansión por las zonas de P. halepensis de la península en los últimos años.

Defolia la parte inferior de la copa y aumenta la susceptibilidad a otros agentes.

Se propaga por semilla. Grave riesgo de propagación de la enfermedadpor planta de vivero obtenida a partir de semilas regogidas en zonas infectadas.

Más información en: BUT 18-19, PB 130-131, SF 332-333

http://www.mma.es/docs/conservnat/pforestal/sofamado.htm, http://www.pfc.cfs.nrcan.gc.ca/nursery/pests/sirococc.htm.

Enfermedades de hojas y brotes (Royas)

Leer: Manion cap. 11 pag. 157

Son..

Ph. Basidiomycota, Cl. Hemibasidiomycetes, Or. Uredinales

Parásitos obligados (alguna se cultiva)

dos hospedantes

Infectan hojas o brotes (tambien cambium y floema en royas de tallo)

Modo de acción

Entran entre celulas y absorben nutrientes por haustorios

Ciclo

Síntomas

Ramas muertas, chancros, agallas

Signos

aedios, uredios, telios, lesion, spermogonios alrededor del chancro

Diagnosis

identificacipon del hongo por las claves

Koch necesita huesped alternativo para conseguir basidiosporas

Ejemplos y control

Cronartium flacidum, Peridermium pini =Endocronartium pini

Basidiomycete, Hemibasidiomycete, Uredinal

Roya vesicular de corteza de pino

Espermacios y aeciosporas en pinos (P. sylvestris, P. pinaster, P. laricio y P. halepensis)

Urediosporas, teliosporas y basidiosporas en Vicetoxicum y Paeonia en C. fl. y en pino en E. pini.

Chancros, resinosis y muerte en varios años; daños serios

Las aeciosporas infectan un nuevo árbol

Podar y quemar ramas con peridios (amarillos conspicuos); entresacar pies afectados

Tuberculina maxima hiperparásito capaz de reducir producción de aeciosporas un 30%

Más información en: PB 151-152, TJ 143-145, SMIT 536-539, CON 30-31, SF 336-337

Melampsora populnea (Pers.) P.Karsten f.sp. pinitorqua R. Hartig

(=Melampsora pinitorqua Rostr.)

Basidiomycetes, Hemibasidiomycetes, Uredinales

Urediosporas, teliosporas y basidiosporas en P. alba y P.tremula

Espermacios y aeciosporas en Pinus sylvestris, P.pinaster, P. pinea

En pino ataca la guia y el árbol no vale para sierra. Peligroso en plantaciones jóvenes.

En chopo no causa pérdidas, ataca al final de la estación. Peligroso en viveros.

Control con fungicidas en vivero y eliminando el huésped alternativo en plantación.

Más información en: PB pág. 148-150, TJ pág. 146-147, SMIT pág. 541-542, CON pág. 33-34, SF 340-341

Imágenes de signos y síntomas.

Gymnosporangium clavariaeforme

Ataca a Juniperus y Crataegus, y ocasionalmente a Pyrus

Información adicional:

PB 199-202, BUT 86, SF 298-299

Imágenes de signos y síntomas.

Melampsorella caryophyllacearum

Forma escobas de bruja y engrosamientos en ramas jóvenes. Al crecer los engrosamientos se forman chancros y grietas que aprovechan otros hongos para infectar..

El huésped alternativo son plantas de la familia Caryophyllaceae.

Primaveras húmedas favorecen la infección.

Inutiliza el árbol si ataca la guía.

Puede causar pérdidas en ataques severos.

Información adicional:

SINC 265-266, PB 184-186, SMIT 543-544, CON 53,74,79, BUT 196, ABG 175-178.

Imágenes de signos y síntomas

 

Enfermedades de hojas y brotes (Bacterias)

Erwinia amylovora

Ataca a rosaceas

Poco importante en montes, pero MUY importante en frutales

Programa de detección precoz

Erradicación de focos

Información adicional:

AGR4 pág. 426-429, SINC pág. 162-165, PB pág. 72-74, MAN pág. 86-88, SMIT pág. 224-226.

 

Enfermedades de hojas y brotes (Plantas)

Viscum album

Hemiparásita

Propagación por pájaros (bayas pegajosas)

Produce clorosis y perdida de crecimiento (20% Abies Pirineo)

Información adicional:

TJ pág. 67-68, CON pág. 38, SF 458-459

 

Enfermedades de hojas y brotes (Plantas)

 

ChMV (Virus (supuestamente) del Mosaico del Castaño)

Causa incompatibilidad de injertos, clorosis venial y necrosis en corteza

No purificado, no identificado

 

Enfermedades del tronco

 

Chancros

Leer: Manion cap. 12 pag. 182  
  Heiniger,-U; Rigling,- ; 1994. Biological control of chestnut blight in Europe. Annu. Rev. Phytopathol, 32: 581-599 biocontrol
  Fernandez de Ana Magán, F.J.; Puertas Tricas, F.; Mansilla Vázquez, J.P.; Traver, C.; Pintos Varela, C.; Rodríguez-Fernández, R.J.; 1993. Lucha integrada contra la enfermedad del " Chancro" del castaño. Proc. Congreso Forestal Español. Lourizan. Ponencias y comunicaciones. Tomo III. (Biblioteca) luchaintecas
  Anagnostakis, S.L. 1999. Chestnut research in Connecticut: breeding and biological control. Acta Horticulturae, 494: 391-394. chestnut
  Oliva Estanyol,-M; Molinass de Ferrer,-ML. 1984. Incidencia de Hypoxilon mediterraneum en los alcornocales gerundenses. Boletín de la estación central de ecología (ICONA),13:9-16 gerunde

Son...

Parásitos de floema, cambium y xylema externo y saprófitos de celulas muertas de floema y xilema

Desde "asesinos" a "puntilleros" pasando por "rémoras"

Oomycotas (Phytophtora), ascomycotas y basidiomycotas

Modo de acción

El hongo entra al tejido vascular donde hay nutrientes. El árbol produce barreras de callo alrededor de la infección para parar al hongo .

Tipos

Saprófitos que contribuyen a decaimiento

no pueden vencer las defensas de los árboles sanos y atacan solo a árboles debilitados

Anuales

Oportunista, infecta por una herida e invade antes de que el árbol responda. Al final el árbol neutraliza al hongo

Parásitos facultativos perennes

permanecen como saprófitos en los tejidos muertos del chancro

invaden en otoño e invierno cuando el árbol esta despistado.

Toleran las defensas del árbol

Difusos

Las defensas del árbol no paran la invasion del hongo cuyo micelio penetra rápidamente y produce toxinas

Ciclo

Esporas infectan heridas o bases de ramas rotas (a veces hojas)

El micelio crece en el árbol y produce conidios y ascosporas si hay infección con una cepa compatible

El micelo sobrevive saprófito en tejidos muertos del chancro, en ramas muertas on el suelo

Diseminación de conidios o esporas por aire, salpicaduras de lluvia, roedores, insectos, motosierras, etc.

Síntomas

Desde decoloración de la corteza o abultamiento hasta chancro enorme

Diagnosis

Identificación del hongo

Aislar el hongo y Koch. El patógeno estará en el borde del chancro en primera linea contra los tejidos sanos del árbol

Ejemplos y control

Saprofitos que contribuyen a decaimiento

Cytospora chrysosperma (Populus y Salix)

Nectria coccinea (Fagus)

Anuales

Fusarium solani chancro de Acer

Parásitos facultativos perennes

Nectria galligena

Ceratocystis fimbriata en Populus

Difusos

Cryphonectria (Endothia) parasitica

Ascomycota, Pyrenomycetes, Sphaeriales

Patógeno y saprófito

Produce conidios todo el año

El árbol muere en unos 10 años

No hay tratamiento, pero...

Cepas hipovirulentas están haciendo retroceder la enfermedad en Italia

C. sativa, C. mollissima y C. crenata tienen una resistencia inducida que aumenta en rebrotes de tocones de los que se ha cortado un tronco enfermo

síntomas: hojas secas en rama y brotes epicormicos debajo del chancro .

Imágenes de signos y síntomas.

Hypoxylon mediterraneum

Ascomycota, Pyrenomycetes, Sphaeriales

Quercus, Castanea, Eucalyptus, Fagus, Juglans, Platanus, Populus

Parásito oportunista, ataca a árboles debilitados

Puede infectar árboles vigorosos y permanecer en ellos sin extenderse hasta que el árbol es debilitado por algún otro factor y entonces extenderse y matar el árbol

Tratamiento: entresaca de pies enfermos y poda. Quema de restos de árboles afectados

Prevención por aclareo de la masa

Tumores / agallas

Corynebacterium halepensioides en P.halepensis

Bacteria causante de la Tuberculosis del pino

Poca importancia, produce tubérculos en las ramas

Agrobacterium tumefaciens

esquema AGR4: 440

No ataca a monocotiledóneas ni a gymnospermas

Grave en frutales, poco importante en bosque

Vive en el suelo entra por heridas

Infecta células dañadas, crece y libera el plásmido Ti que entra en las células adjacentes y se incorpora a su genoma. Las células modificadas se dividen y multiplican anormalmente y se forma la agalla.

La bacteria vuelve al suelo con trozos del tejido que caen de la agalla

Control biológico: Agrobacterium radiobacter cepa 84 inhibe la transferencia de Ti de Agrobacterium tumefaciens

Vector genético: Ti atenuado puede introducir genes en el genoma de la planta

 

Marchitamientos vasculares y azulados

Leer: Manion cap. 13
  Manion cap. 15
  Pajares, J.A. y Martínez, A. 1990. Métodos y estrategias de control de la grafiosis. En "Los olmos y la grafiosis en España", Gil, L. (Ed.). MAPA, ICONA, Madrid (Biblioteca)
  Cadahia, D. 1999. Bursaphelenchus xylophilus, (Steiner et burhrer) (Nematoda: Aphelenchodidae). Peligro proximo para los pinares de España y Portugal. Terralia, 3 (10): 22-28.

Modo de acción

Invasión de vasos y marchitamiento

Tilosas taponan los vasos

Esporas o hifas taponan la placa cribosa terminal de traqueidas

Producen toxinas

Cambio en la viscosidad del contenido de los vasos

Parasitan las células del parénquima anexas a tubos cribosos

Embolia

Las hifas de color oscuro creciendo por los vasos causan la coloración azulada.

Ciclo

Entrada de esporas por herida en raíz o tallo. El vacio mete las esporas por toda la planta

Producción de micelio o más esporas (gemación). El hongo pasa por las placas cribosas para infectar celulas de parénquima

Esporulación y diseminación cuando el árbol muere

Esporocarpos y conidioforos adecuados a dispersión por insectos

Peritecios de cuello largo acumulan esporas en matriz pegajosa en la punta

Conidióforos agrupados en coremios con esporas en matriz pegajosa en la punta

Síntomas

Marchitez en las hojas y en seguida senescencia con caida o no

Coloración en los vasos del año en ramas afectadas

Azuleo radial

Diagnosis

Identificación del hongo aislando de rama infectada por fructificaciones asexuales.

Ejemplos y control

Grafiosis, Ophiostoma ulmi

Ascomycota, Pyrenomycetes, Sphaeriales

Patógeno y saprófito

Ataca preferentemente árboles debilitados por Galerucella luteola

Multiplicación rápida por conidios y gemación

Dispersado por Scolytus scolytus y S. multistriatus

Toxinas del hongo inducen tilosis del árbol que bloquean vasos

Hacen falta varios ataques en años consecutivos para matar un árbol

Tratamiento sólo a base de inyección de fungicidas para árboles de interés especial

Prevención:
impidiendo ataques de Galerucella y de Scolytus

Quemar todos los olmos atacados o muertos

Aclarar o eliminar competencia de otras especies

Plantar variedades resistentes

Plantar sólo en zonas donde no se de la enfermedad

Imágenes de signos y síntomas.

Ceratocystis fagacearum

Ausente en Europa (todavía) pero grave en Norteamérica. Los robles europeos son susceptibles.

Prevención en importaciones: a) tratamiento con bromuro de metilo (hasta el 2003), b) descortezar troncos.

"Azuleo"

Estos hongos atacan a la madera recien apeada que todavía tiene la albura viva y atrae escolítidos.

Evitar infección inmediatamente despues de corta subiendo o bajando el contenido de humedad, mediante fungicidas o descortezando para evitar la entrada e escolítidos.

Si la madera está infectada, el hongo volverá a crecer si las condiciones ambientales son buenas.

Bursaphelenchus xylophilus

Nematodo del Pino

Ha llegado a Portugal

Importantísimo extremar precauciones.

Todas la especies de Pinus de la península son susceptibles

Es dispersado por un cerambícido.

Causa sítomas de marchitamiento vascular.

Control: Detección precoz y erradicación.

Descomponedores de madera

Leer: Manion cap. 14  
  Shigo, A.L.; Hillis, W.E. 1973. Heartwood, discoloured wood and microorganisms in living trees. Annu. Rev. Phytopathol. 11: 197-222. heartwood

Tipos

Descomponedores

duramen de árboles vivos **

árboles muertos x

productos de la madera x

Pudrición de copa o de tocón

Pudrición parda, blanca, blanda

parda

Descomponen celulosa y hemicelulosa y dejan lignina (pudrición cúbica)

hymenomycetes

blanca

descomponen lignina, celulosa y hemicelulosa, pero dejan algo de celulosa (pudrición fibrosa)

hymenomycetes

blanda

Descomponen celulosa y hemicelulosa (cuarteado superficial)

Ascomycetes y Deuteromycetes

Modo de acción

Madera húmeda por encima del punto de saturación de la fibra pero por debajo del punto de saturación de la madera para que haya aire

Hongos de pudrición blanda descomponen madera saturada de agua, pero sólo las capas superficiales donde llega el oxígeno del agua

El hongo crece por el lumen de las células y se rodea de una capa mucilaginosa por donde difunden los enzimas y los productos de degradación de la madera

No "matan" los árboles, debilitan los troncos y otros agentes los tiran

Comparación entre descomponedores de albura (azulado) y de duramen (pudrición)

 

azulado

pudrición

sustrato

citoplasma

pared

atacan

albura

duramen

humedad

=

=

Oxígeno

=

=

temperatura

=

=

 

Ciclo

espora llega a herida susceptible que deja duramen al descubierto(inhibidores, humedad, temperatura)

espora germina; hifas crecen por lumen de células y pasan de célula a célula por lámina cribosa y después por agujeros hechos por ellas

el árbol se defiende:

produciendo compuestos fenólicos tóxicos en la herida que inhibe hongos

creando compartimentos e impidiendo el acceso del hongo de unos a otros (dentro: madera de verano; fuera: cambium; ariba y abajo: tilosis

en algunos hongos la espora es haploide y necesita una segunda espora para que el micelio sea dicariótico y pueda fructificar.

Infección / invasión

Hartig: infección por esporas termina en descomposición

Haddow-Etheridge: infección de ramas pequeñas, latencia hasta debilitación del árbol

Shigo: sucesión bacterias - deuteros - basidios

Humedad: si el xilema está saturado no hay infección, solo cuando está alterado que pierde agua

Efectos

Pérdida de peso

Por oxidación a CO2+H2O de la celulosa y lignina

Pérdida de resistencia

Pudrición parda causa mayor pérdida de resistencia porque rompe cadenas de celulosa al azar por métodos químicos, pudrición blanca las rompe por los extremos con exocelulasas y tarda más en perder resistencia

Pérdida de madera en pie

Estimar el volumen de madera afectado para deducirla del total

Reciclado de residuos por saprófitos

Descomponen los restos de madera en el suelo. Pueden atacar árboles enfermos

Aumento de permeabilidad de la madera

Favorece la entrada de agua y posteriores ataque de hongos

Aumento de conductividad de la madera

Por la pérdida de estructura celular

Cambios en volumen de madera

Causan torsión en el secado, peor en pudrición parda

Cambios en calidad para pulpa

Peor en pudr. parda

Decoloración de la madera

Problema o ventaja

Métodos de detección

Macroscópicos

esporocarpos , nudos hinchados, bases de ramas podridas, cicatrices de fuego

Microscópicos

Presencia de hifas (necesario, pero no suficiente) o paredes degradadas por su acción

Aislamiento e identificación

Aislar del frente de avance del hongo si es posible

Claves de identificación

Diferencias de pudrición de duramen / saprófitos

 

 

Pudrición

Saprófitos

Fructifican base de ramas muertas todo el tronco
Esporocarpos pocos grandes muchos pequeños
Especies pocas muchas

Ejemplos

Fomitopsis pinicola

Pudrición parda. Ataca a árboles debilitados o descompone árboles muertos.

Información adicional

SINC 348-349, SMIT 585, CON 23, BUT 165-166, SF 446-447

Corazón rojo

Causada por varios hongos (Oxyporus, Ganoderma, Ungulina )

El color ocurre por la muerte de células del árbol, no por la degradación de sus paredes

La madera del falso duramen tarda muchos años en pudrirse y no suele perder resistencia

Información adicional:

TJ 127-129

Roig

Producido por Laetiporus sulfureus (al menos)

Daños serios en castaño

Entra por heridas y produce pudrición cúbica

Información adicional:

BUT 169

Papel en el ecosistema

Estos hongos retiran los árboles inferiores y los viejos de la masa.

No cortar árboles afectados es hacer selección genética negativa

Apeando árboles viejos o muertos favorecen la sucesión y el ciclo de nutrientes (un árbol en pie tardaría mucho más en descomponerse)

Importancia en silvicultura

Las heridas al aclarar un monte bajo aumentarán las pudriciones en la estación (quitar rebrotes próximos a corte)

Los árboles suprimidos es facil que estén infectados. Si se dejan en un aclareo, la siguiente corta tendrá mucha pudrición.

Control

Evitar heridas (tratamiento de heridas no está claro)

En podas, no cortar las ramas a ras del tronco

No dejar árboles suprimidos en un aclareo

 

Enfermedades de raíz

Leer: Manion cap. 16,  
  Abreu Trigueros,-MJ. 1990. Heterobasidium annosum (Fr.) Bref.: Un hongo del suelo parásito de especies forestales. Cuadernos de Fitopatología,23:90-94.  
  Pratt, J. E. 1997.Fomes stump treatment - an update. Quarterly Journal of Forestry, 91(1): 63-65.  
  Vieitez,-J; Ballester; Mantilla,-JLG; Vieitez,-E. 1983. Sobre la resistencia del castaño a Phytophthora cinnamomi y Ph cambivora. Congreso Internacional sobre el Castaño. Lourizán (Pontevedra).  
  Cobos, P.1989. Fitopatología del castaño. MAPA, Bol. San. Veg. Fuera de serie Nº16. Pag. 53-58.  
  Garraway, M.O.; Hüttermann, A.; Wargo, P.M. 1991. Ontogeny and Physiology (of Armillaria root disease). In "Armillaria root disease". Shaw III, C.G.; Kile, G.A. (Eds.), Agriculture handbook No. 691. Forest Service, USDA. Washington, D.C.  
  Fernandez de Ana Magán,-FJ. 1982. Las hogueras en el monte y el ataque del hongo Leptographium gallaeciae sp. nv. sobre P. pinaster Ait. Boletín del Servicio de Plagas, 8 : 69-92. hogueras

 

Medio bosque

Pseudotsuga menziesii,

40 años

Coast Range, Oregon, EEUU,

Fogel and Hunt 1979

Reducciones de crecimento hasta 20% sin síntomas

Tipos

Patógeno dominante, tejido no específico

Protoctistas, Oomycota, Peronosporales, Pythiaceae, Phytophtora y Pythium

Generalistas

Capaces de encontrar un punto debil, vencer defensa del árbol e invadir rápidamente

Descomponen tejido de raiz en poco tiempo

Árbol muere por deficiencia de nutrientes

Hospedante dominante, tejido no específico

Basidomycota

Armillaria sp., Heterobasidion annosum, Phellinus werii

Viven como saprofitos en tocones muertos o pudrición de duramen en la base del tronco o raices estructurales. Un cambio en el vigor del árbol les permite saltar al cambium y matar el árbol

Desde una raíz pueden atacar la superficie de otra, debilitar el cambium y atacarlo después

Reducción de crecimiento en árboles sin síntomas

Hospedante dominante, tejido específico

Verticillium, Leptographium (black stain)

Entran por la raíz, infectan el tejido vascular, y cuando el árbol muere invaden el cambium (mecanismo mal conocido)

Algunos pueden pasar tiempo en el cortex antes de entrar a los vasos

Ciclos

Basidiomicetes

Esporas o conidios infectan heridas

Invasión de tejidos

Pudrición de madera

Formación de esporas/conidios

Dispersión: viento o insectos

injertos de raíz

rizomorfos (Armillaria)

Oomicetes

Zoosporas buscan un punto de entrada

Germinación, invasión

Descomposición de la raíz

Formación de esporangios - zoosporas (asexual, más infección)

Formación de anteridios/oogonios - oospora (sexual, resistencia)

Síntomas

Deficiencia de nutrientes y/o agua

Clorosis

Falta de crecimiento

Síntomas por rodales

Rodales de árboles muertos y árboles debilitados alrededor

Raices muertas, falta de raices secundarias

Diagnosis

Raices muertas

Fructificaciones de patógenos de raíz

Dificil de aislar porque hay muchos saprófitos en el suelo

Si se sospecha el agente se puede intentar cultivar con medios selectivos o capturar con un cebo.(Phytophtora)

Ejemplos y control

Phytophthora cinnamomi

 

Tinta del castaño (ataca a otras 950 especies Chamaeocyparis lawsoniana es muy sensible)

Citado en España en 1726 (Extremadura)

Causante de la desaparición de castañares en el N y O de la peninsula

Parásito y saprófito en el suelo

Propagación por micelio transportado, zoosporas y esporas de resistencia

Control

Tratamiento:

descalce y fungicidas en base del tallo (Torres Juan)

Prevención:

Planta resistente (desarrollada en CIF Lourizán)
Suelos bien drenados
Movimiento de vehiculos en tiempo húmedo
Micorrizas antagonistas?

Información adicional

TAIN pág. 340-363, SINC pág. 288-291, PB pág. 279-281, MAN pág. 297-299, TJ pág. 113.117, PAVE pág. 939-948, COB pág. 53-58, MUÑ pág. 40-41,51-54, SMIT pág. 252-254, CON pág. 4,5,6, ABG 273-276, 369-372.

Armillaria sp.

Basidiomicetes, Himenomycetes, Agaricales

Parásito y saprófito

Parásito del cambium (anillador) y pudridor de duramen

Propagación por esporas, rizomorfos e injertos de raíz

Rizomorfos debajo de la corteza en el cuello de la raíz

Control

Plantar especies resistentes (si las hay en la zona)

Arrancar o fumigar tocones y cavar zanjas alrededor (extremo)

Subcontratarle el aclareo precomercial

Mantener la masa con buén crecimiento

Imágenes de signos y síntomas.

Información adicional

AGR4 pág. 397-399, TAIN pág. 419-431, SINC pág. 308-313, MAN pág. 299-303,330-334, SMIT pág. 587, CON pág. 13-14,87, BUT 157-159, ABG 53-56.

Heterobasidion annosum (Fomes annosus)

Basidiomicete, Himenomycete, Aphyllophorales

Parásito y saprófito

Propagación por esporas infectando heridas o tocones e injertos de raíz

Pudre las raices estructurales y el viento tira el árbol

Ataca prefentemente a árboles jóvenes en plantaciones monoespecíficas

Control

Evitar heridas

Tratar tocones nada más cortarlos con urea, borax, NaNO3 o Phebiopsis gigantea

Información adicional

AGR4 pág. 196, TAIN pág. 393-410, SINC pág. 314-317, PB pág. 92-112, MAN pág. 303-306, TJ pág. 142-143, PAVE pág. 940,954-955, SMIT pág. 582-584, CON pág. 12,13, BUT 150-153, ABG 57-60

Presentación de la asignatura